lunes, 22 de junio de 2009

elaboracion de un frotis borrador

Practica no. 5 frotis borrador

Materiales:
Portaobjeto
2 cajas petri con medio de cultivo
Asa bacteriológica

Mechero
Vaso de precipitado

Introducción

Esto lo hacemos porque tenemos que seguir aprendiendo sobre los medios de cultivo porque nos hemos ido paso a paso por medio de las instrucciones del maestro he aprendido ha realizar siembra a aunque he cometido errores
Objetivo
Es aprender a realizar un frotis bien y saber cuales son sus pasos exactamente sin sacar apuntes
Desarrollo.
Preparación de un frotis solicitamos el material que es torunda de algodón vaso de precipitado y el medio de cultivo nos lo dio el profe ya realizado la clase pasada.
Primero secamos el portaobjeto después el vaso de precipitado le pusimos agua destilada y empezamos realizar el trabajo que es la esterilización de un frotis

Borrador de la practica no. 4

Borrador de la practica no. 4

Objetivo
Es aprender a utilizar el microscopio adecuadamente observar el aceite de palo as saber que tipo de bacteria encontramos y cual es su nombre.

Indicaciones

El alumno debe obedecer bien las indicaciones para poder hacer bien las observaciones y poder distinguirlo.

Desarrollo.

En le medio de cultivo descubrimos bacterias pero también nos dimos cuenta que los medios de cultivo tenían diferentes colores y cada medio de cultivo presenta diferente bacteria a prendí que como los hongos crecen de un día a otro.

d. saboraud: este medio de cultivo llevo 2 días para crecer el primer día a penas se miraba las bacterias el dibujo no tenia forma pero al segundo día se notaba los hongos habían crecido mucho alrededor de la caja petri observe que el hongo que salio tenia forma de gusanito muy pequeño y apenas se notaba.

Medio de cultivo de tapiz; Este medio al día siguiente ya tenia hongos muy avanzados que se notaban alrededor y al centro de la caja petri se notaba a simple vista observe que tenia forma de gusanito.

Medio de cultivo inverso: este medio es extraño porque esperaba que tuviera hongos lo observe y de veía igual no se veía nada lo único que se miraba era chispita de agua alrededor de la caja petri lo dejamos dos días mas y se miraba igual esta siembra fue extraño.

Medio de cultivo de separación.
Observe que tenia hongos y que también tenia chispita.
Medio de cultivo de kanss:
Observe que tiene hongos muy parecidos a los otros

Borrador de la practica no. 2esterelizacion

Borrador de la practica no. 2esterelizacion


Materiales
Matraz de 250 ml
Balanza gran ataría
Espátula
Vidrio de reloj
Vaso de precipitado
Probeta graduada 100 ml.
Vaso de precipitado 50ml
Varilla de cristal
Mechero de bucee
Mechero fischer
Agua destilada torundas de algodón
Papel secante cinta masquitape color café
Medio de cultivo Borrador de la practica no. 2esterelizacion
Esterilización

Desarrollo
utilizaos una balanza y los materiales para pesar después lo esterilizamos lo pusimos al autoclave después del tiempo lo sacamos para ponerlo en la mesa después nos dieron las cajas para aguardarlo nos tuvimos que apurar para poder sacar el trabajo a tiempo.


Conclusión
Se me hizo fácil realizar esta práctica fue mas rápido con menos presión ymedi cuenta de cosas que no me imagine poder conocer y realizar.

Borrador de la practica no. 2esterelizacion

Borrador de la practica no. 2esterelizacion

Materiales
Matraz de 250 ml
Balanza gran ataría
Espátula
Vidrio de reloj
Vaso de precipitado
Probeta graduada 100 ml.
Vaso de precipitado 50ml
Varilla de cristal
Mechero de bucee
Mechero fischer
Agua destilada torundas de algodón
Papel secante cinta masquitape color café
Medio de cultivo

Desarrollo
utilizaos una balanza y los materiales para pesar después lo esterilizamos lo pusimos al autoclave después del tiempo lo sacamos para ponerlo en la mesa después nos dieron las cajas para aguardarlo nos tuvimos que apurar para poder sacar el trabajo a tiempo.

Conclusión
Se me hizo fácil realizar esta práctica fue mas rápido con menos presión ymedi cuenta de cosas que no me imagine poder conocer y realizar.

domingo, 21 de junio de 2009

practica 6 elaboracion de un froptis

Frotis realizado y fijado en portaobjetos, el cual debe de pasar a el proceso de tincion utilizando la tec. de forma correcta ya anteriormente investigada.Esta tec. se basa en 9 pasos donde se aplican los tiempos necesarios. El frotis debe pasarse en el proceso de tincion sin pasarse de los tiempos indicados ya que se puede quemar el producto ya realizado lo que ocasionara volverlo a realizar desde el principio ( debemos realizar las cosas ya que el tiempo es nuestro enemigo)
Si el frotis queda bien teñido se dejara listo para el sig. proceso que es la observacion microscopica.

a puntes de la practrica no. 9

Practica 9 Aglutinacion en sangre
MATERIALES


Sangre fresca 2.5ml
tubo de tapon morado con anticoagulante
palillos de madera
placa de porcelana escabada para tipo sangineo
algodon con alcohol
2 torundas de algodon secas
masquin tape
tipyficadores para tipo sangineo (reactivo) antiA,antiB y antiD.
papel secante
papel para cubrir mesa
mesa lab.
pipeta pasteur y bulbo
DESARROLLO

Tecnica de venopuncion
Una vez obtenida la sangre fresca del paciente en vol. de 2.5ml se trasbasa al tubo de tapon morado con anticoagulante en el que se le da ligeros movimientos para que se mezcle con el anticoagulante y poder ser utilizada. Se utiliza la pipeta pasteur con bulbo de extraccion y se extrae una cantidad de sangre del tubo ya indicado para puntear una pequeña gota en cada escabacion en la placa de porcelana, el resto de la sangre se deposita en el tubo se enjuaga la pipeta y se ............................................................................ . Una vez punteada la placa escabada de porcelana se le agrega una gota de reactivo diferente en cada excabacion para poder obtener una reaccion entre sangre y el suero sangineo. Se aplica el reactivo antiA como numero uno y se registra el color , como numero 2 se aplica el antiB. Una vez obnetida la pruba de aglutinacion debemos reportar nuestro trabajo dentro del marco preanalitico , analitico y postanalitico

a puntes de la practica no. 4

Practica 4.
Titulo: elaboración de un frotis
El alumno debe realizar un trabajo de frotis en el cual debe realizarun trabajo y una investigscion muy sencillo en materia de frotis el cual después de su investigación bibliográfico debe realizar de forma practica .
Materiales: caja petry
Medio de cultivo con microorganismo
1 asa bacteriológica
2 mecheros de bulce
3vaso de precipitado 50ml
4. 25 ml de agua destilada.
Desarrollo.
Con el asa bacteriológica se va realizar un frotis en un pota objeto de cristal.
2. se toma asa bacteriológica se pone en el porta objeto dejándolo al rojo vivo para que se esterilize, se retira del fuego se toma una pequeña gota de agua destilada con ella misma se extrae una pequeña muestra bacteriológica creció en la caja petry. Una vez teniendo este material en el asa se acude a depositarlo en el porta objeto en la parte central desplazando de izquierda a derecha el material bactereologico hasta que nos quede una película delgada, una vez teniendo verificamos con el estructor si ya esta lista para poderla fijar al calor.
Ya realizado el frotis se fija de forma de su forma de sus partes literales para su transporte. Se toma el porta objeto de forma lateral por ensima de la flama nunca se deja de forma directa en la flama . se toma el porta objeto de forma lateral por ensima de la flama.
Una vez fijado el frotis que da listo para el proceso de tinción técnica de esterilización ( porcalor) se esterilizara 15 libras y una temperatura de 120c una vez terminada se deja enfriar se libera del auto clave y se entrega alas mesas de caja petry. Para el envasado de cajas petry se requiere un campo de esterilización.
Se utiliza vaso de precipitado de 50ml lo cual se pasara de forma breve a la boquilla para que esterelizara la cantidad requerida y se vacia ala caja petry dejándola abierta con su tapa sobre ensima esta será todas las veces necesarias para que se haga el llenado de caja ya estando solido el medio de cultivo se tapa se etiqueta y se deposita en el enfriador la fecha y el nombre. Conclusiones de la practica bibliografía y individualmente.

apuntes de clase practica no. 2

Practica no 2
Siembra de cultivo
Asa bacteriólogos
2. vasos de precipitado con agua destilada 15 a 20 ml
3. 2 mecheros a4 cajas de petry con medio de cultivo elaborado
5. papel para cubrir mesa de laboratorio masqui para detectar caja petry jeringa desechable 5 ml t5orniquete torundas de algodón alcalizados tubo de ensaye tapon color rojocentrifuja tubo cónico para orina o loquete y porta objeto.
Muestras de desechos. Toma de muestra sangre fresca 2.5 ml ( se deposita en tubo con tapón rojo)
2. orina (6 botecitos )
3. muestra de cavidad o ral en espacio interdentales hisopos con punta de algodón saliva . 4. Agua preparada en la calle en agua fresca.
5. raspado interdigital con porta objeto , cubre objeto.
6. se realiza el proceso de siembra , por estrías el medio de cultivo contiene las cajas petry siendo este el solido. Se utiliza el asa bacteriológica pasándola por el mechero y al poner al rojo vivo esta queda esterilizada. Una vez esterilizada el asa se toma una pequeña gota de agua esterilizada y se pasa tomar la muestra de desechos que se pretende sembrar esto es en los materiales de preferencia solido para los materiales liquidos solo se esteriliza se toma el producto y se aplica en la caja petry realizando una siembra de los 7 tipos mostrados en el pizarrón. Para poder sembrar una muestra de cavidad oral de espacio intermental se requiere de un hisopo esterelizado tomando la muestra del paciente y se aplica en la caja petry en forma de estriado. Dentro de los 7 modelos de siembra anteriormente dados unos de ellos de ellos requiere varilla de cristal para poder sembrar el producto. Durante el proceso el proceso practico debemos realizar nuestra bitácora de actividades elaborando en una hoja cuadriculada para asignar cada una de las actividades enumeradas llevando su secuencia en tiempos y en la cual debemos anotar fechas de trabajo realizado.
También debemos realizar nuestra bitácora en base al mantenimiento prevención de nuestros equipos-
Practica 3 observaccion macroscópica de caja petry los materiales solicitar las cajas petry ya con medio de cultivo elaborado .
2. venier o pie de rey (estudiar)
3. 4 torundas de algodón seco , torundas de algodón alcalizados .
4. registrar observaciones en caja petry 2 mecheros.
Desarrollo 1
Se depositan en la caja petry en la mesa del laboratorio previamente en la mesa vestida con ´papel blanco observamos los crecimientos de microorganismos de medio de cultivo anotando colores ,olores dimensión desde las mas pequeñas hacia las mas grandes para ello necesitamos abrir la caja en nuestro campo de esterelizacion a base de los mecheros.
Para poder medir las colonias de microorganismo utilizaremos una herramienta de medición denominada venier, medimos y anotamos con sus respectivos grafico.
Nota: para poder realizar todos los trabajos en borradores y que sus graficos debemos contar con colores o bicolores, y para poderlos subir al blog tomar sus fotografícos.
Cada grafico debe llevar el pie de grafico o pie de foto donde nos indica la información de lo que estamos plasmando .

borrador de la practica no. 1

Borrador de la practica no. 1

Introducción

Esta practica lo realizamos para aprender a pesar y saber cuanto pesa cada material de laboratorio para medio de cultivo ya que esto nos servirá mas adelante.
Re hidratar 36gr del medio de cultivo de 1 L de agua destilada. Reposar de10 a 15 minutos agitándolo frecuentemente hasta el punto de ebullición durante 1 minuto para disolverlo por completo. Esterilizar en el autoclave 121 de presión durante 15 minutos enfriar aproximadamente a 45 vaciar en caja petry
Pesamos el polvo en el vidrio de reloj y nos dio 8.2gr solicitamos el agua destilada, hicimos la regla de 3 después prendimos el mechero de buce después agitamos el medio de cultivo no sirvió porque se nos rego no lo hicimos bien porque el profe nos dijo que teníamos tacha toda la mesa lo pusimos a esterilizar, después puso nota en el pizarrón.

martes, 26 de mayo de 2009

practica 7

PRACTICA7 3 unidad



OBSERVACION MICROSCOPICA EN ONBETIVO DE 100x con
Aceite de palo (aceite de inmersión)

Una vez terminada la tinción en la laminilla de cristal séle aplica una jota de aceite de inmersión para poder observarlo

MATERIALES.

Laminilla de cristal teñida
Aceite de inmersión
Hoja de papel para limpiar el microscopio (compuesto o fotónico)
Torunda de algodón seca y con alcohol
Papel secante

DESARROLLO:

1 la laminilla séle deposita una jota de inmersión
2 se monta la laminilla al microscopio sobre la platina y que quede bien ajustada con las pinzas de la platina.
3 observamos en el objetivo de 100x para poder clasificar las estructuras de los microorganismos encontrados que son esferas, rueditas o bolitas en 1, 2, 3,4, en cadena de 5 o 6 o agrupadas en bastones y séles del nombre de bacilos y rueditas.

lunes, 18 de mayo de 2009

practica no.1

Practica # 1 14- Mayo- 2009
MEDIO DE CULTIVO

Pre analítica


1 Objetivo (realizar por el alumno)

2 Introducción

3 Indicé

4 Materiales

5 Instrucciones:


1 Llegar puntualmente al Laboratorio.

2 Disponer de equipo de Bioseguridad para realizar trabajo de Laboratorio (5 minutos)

3 Solicitar vale para materiales de Laboratorio y vestir mesa de Laboratorio con papel de color blanco para poder obtener un camo estéril , un alumno de los que están adentro de laboratorio para realizar la practica, debe de anotar en el pizarrón los materiales que se ocuparan en la misma.


4 Materiales para medio de cultivo:


Cristalería:

Matraz Erlenmeyer de 250 ml

Probeta graduada 250 ml

Baso de Precipitado 250m

Vidrio de reloj

Varilla de cristal o Agitador

Espátula


Peso y Medidas:

Balanza granataría


Materiales de Apoyo:

Utilizando técnica de Auto esterilización (autoclave)
Mechero de punzel o mechero ficher
Torundas de Algodón secas.
Papel secante color gafe
Cinta masquintape color Gafe


Reactivos:
Medios de cultivo
Indicaciones para el desarrollo del medio del Cultivo
1 Pesar el polvo del medio de cultivo utilizando el vidrio de reloj, realizando regla de 3. Solicitar al Laboratorio agua destilada dependiendo la cantidad de producto que se valla a agregar, el producto que vallamos a ocupar de cajas petri siendo un total de 7 cajas petri por mesa.
Una vez pesado el polvo de medio de cultivo se mescla en el contenido de agua que se tiene en el baso de precipitado. Para poder mesclar que no queden gránulos se utiliza una varilla de cristal para agitar con forme a las manecillas del reloj, asta que se disuelva el polvo en el agua.
Una vez que ya tenemos la mezcla echa dejamos reposar el producto de acuerdo a las indicaciones que contiene el deposito del medio de cultivo.
NOTA: Las indicaciones del medio de cultivo o lo tiene en la etiqueta, se debe transcribir para conocer bien los datos.
2 Se le da el nombre de re hidratar al polvo con el agua y observando las indicaciones dadas se tomaran porcentajes requerido de polvo para la mezcla con el agua que se solicitan de acuerdo a las cajas petri que se vallan a preparar.
3 Después del reposo del producto se le da movimientos en votación de acuerdo de muñeca exponiéndolo al fuego de mechero, estos movimientos y exposición darán como resultados una ebullición ervord y se le dará desde momento que inicia la ebullición 1 minuto de tiempo para que quede listo nuestro medio de cultivo en forma liquida.
Se debe tener cuidado con la ebullición del producto en el matraz Erlenmeyer ya que este puede rebasar sus limites y ocasionar un accidente para quemaduras. Una vez terminado el proceso de ebullición del medio de cultivo se deja enfriar, se tamponea con torundas de algodón se cubre con cinta masquen tape se etiqueta con registros del medio de cultivo, numero de mesa y la fecha de elaboración y hora.
4 Todos correrán (2,3) todos los integrantes se pondrán de acuerdo para el proceso de esterilización en el auto clave.
Que ya previamente prepararon al inicio de la práctica.
Técnica de Esterilización en el Auto Clave (calor húmedo)
Se esterilizara el producto a 15 libras de presión y una temperatura de 120* centígrados durante 20 minutos, una ves terminad ala esterilización se deja enfriar el producto, se libera del Autoclave se entrega en las mesas y se llevara acabo el baseado en las cajas petri.
Para el baseado en cajas petri se requiere de un campo de esterilización en la mesa con 2 mecheros para que el producto, se libere del autoclave se entrega en las mesas y se llevara acabo el baseado en las cajas petri.
5 Se utiliza baso de precipitado de 50 ml, el cual se pasara en forma breve por el fuego en la boquilla del baso para que este, este esterilizado, se le vierte el producto en la cantidad requerida y se bacía en la caja petri, dejándola abierta con su tapa, sobre encimada, asta que enfrié. Estos se hará todas las veces necesarias del llenado de cajas.
Ya estando solido el medio de cultivo se tapa, se etiqueta y se deposita en el enfriador.
Conclusiones de la práctica.
Bibliografía- ficha bibliográfica
Glosario.

apuntes de clase 2l2m

3ra Unidad (clase) 12 - mayo- 2009
Practica 1

Operar equipo de laboratorio en materia de reactivos "Medios de Cultivo"

1 Elaborar un medio de Cultivo
2 Tecnica de ezterilizacion
3 Siembra en medio de Cultivo
4 Observacion macroscopica de colonias que se desarrollan en el Medio de Cultivo
5 Elaboracion de Frotis
6 Tincion de Gram
7 Oberservacion microscopica en objetivo 100x con aceite de palo
8 Prueba de aglutinacion en reacciones febriles
9 Prueba de Aglutinacion en Sangre (HB)

Pruebas de Aglutinacion.

Materiales :
Sangre
Jeringa
Torniquete
Torundas de algodon
Tubo con tapon rojo sin antiguaculante
centrifuga
lamina de cristal para reacciones febriles
Palillos de Madera
Papel Secante
Papel para forrar la mesa de Laboratorio´

Se le anexa la hoja de solicitud de examenes, indicaciones para el paciente en hoja de laboratorio, donde se registra y se le da la orden al paciente donde se registra ( registro y folio de laboratorio)

1 Técnica de extracción de sangre (venopuncion)
2 Extraer 2.5 a 3 mililitros de sangre. (Tubo)
Técnica de separación de paquete sanguíneo y plasma

Posanalitica

Inmunologia ( pruebas serologicas)
Datos del paciente y resultado de la prueba ( tifico H) ( tifico O) (Paratifico A)

tarea no.4 bitacora

Bitacora : Es un cuaderno en el cual estudiantes, diseñadores y trabajadores de empresas en general, entre otros, desarrollan su trabajo, anotan cualquier información que consideren que puede resultar útil para su trabajo. Esto no se aplica solamente a asuntos laborales.

tarea no.3 medios de cultivo

Medios de cultivos

Medios de cultivo : Solución que cuenta con los nutrientes necesarios para recuperar, multiplicar, aislar e identificar los microorganismos (bajo condiciones favorables de temperatura y pH), así como efectuar pruebas de susceptibilidad. Generalmente se presentan desecados en forma de polvo fino o granular antes de ser preparados, al prepararse podemos encontrarlos en estado sólido, semisólido y líquido.

Clasificacion :
Según su estado físico:
Sólido: Se utiliza un agente solidificante (el agar) en una proporción por encima del 15% (12-15 g/L). En ellos las bacterias crecen con mayor dificultad, pues los nutrientes se agotan con rapidez en el punto donde se desarrollan no obstante nos permite el aislamiento, purificación y visualización de su crecimiento en colonias, así como su posible identificación a través de medios específicos y diferenciales de caracteres sólidos, elaboración de antibiogramas, etc.
Semisólido: Presentan agar en su composición e una proporción menor al 5% (2,5g/L). Se utiliza especialmente para el estudio de algunas propiedades bioquímicas (oxidación-fermentación)
Líquido: No contienen ningún tipo de agente solidificante y son también denominados caldos. Favorecen mucho el desarrollo y multiplicación de las bacterias porque al difundirse éstas por todo el medio encuentran con facilidad las sustancias que necesitan para nutrirse. Se de gran utilizad para la realización de múltiples pruebas.
Según su composición
Medios naturales: Aparecen sustancias orgánicas e inorgánicas que se presentan de manera natural.
Medios semisintéticos: Aparecen moléculas naturales hidrolizadas.
Medios sintéticos: Aparecen sustancias químicas definidas. Son los más utilizados.
Medios complejos: Su composición no está exactamente definida. Su uso está restringido (sólo en virología y parasitología)
Según el uso a que se destinan
Medios para aislamiento: Se pueden obtener a partir de ellos colonias aisladas. Según sea su composición se dividen en: Medios enriquecidos, Medios selectivos, Medios diferenciales.
Medios para crecimiento general: También llamados comunes, son apropiados para el cultivo de la mayoría de los m.o por la facilidad con que se desarrollan en ellos.

miércoles, 13 de mayo de 2009

tarea no. 2

escherichia coli
Escherichia coli (E. coli) es quizás el organismo procarionte más estudiado por el ser humano, se trata de una bacteria que se encuentra generalmente en los intestinos animales y por ende en las aguas negras. Fue descrita por primera vez en 1885 por Theodore von Escherich, bacteriólogo alemán, quién la denominó Bacterium coli. Posteriormente la taxonomía le adjudicó el nombre de Escherichia coli, en honor a su descubridor. Ésta y otras bacterias son necesarias para el funcionamiento correcto del proceso digestivo. Además produce vitaminas B y K. Es un bacilo que reacciona negativamente a la tinción de Gram (gramnegativo), es anaeróbico facultativo, móvil por flagelos peritricos (que rodean su cuerpo), no forma esporas, es capaz de fermentar la glucosa y la lactosa y su prueba de IMVIC es ++--.
Es una bacteria utilizada frecuenteRol normal
E. coli, en su hábitat natural, vive en los intestinos de la mayor parte de mamíferos sanos. Es el principal organismo anaerobio facultativo del sistema digestivo. En individuos sanos, es decir, si la bacteria no adquiere elementos genéticos que codifican factores virulentos, la bacteria actúa como un comensal formando parte de la flora intestinal y ayudando así a la absorción de nutrientes. En humanos, E. Coli coloniza el tracto gastrointestinal de un neonato adhiriéndose a las mucosidades del intestino grueso en el plazo de 48 h después de la primera comida.

Escherichia coli se movilizan con flagelos (estructuras largas y delgadas) que rotan en contra del sentido de las manecillas del reloj , provocando que la bacteria se mueva a favor de las manecillas del reloj.

E. coli O157:H7
Artículo principal: Escherichia coli O157:H7
La Escherichia coli O157:H7 es una de cientos de cepas de la E. coli. Aunque la mayoría de las cepas son inocuas y viven en los intestinos de los seres humanos y animales saludables, esta cepa produce una potente toxina y puede ocasionar enfermedades graves como el Síndrome urémico hemolítico.
La E. coli O157:H7 fue reconocida inicialmente como causa de enfermedad en 1982 durante un brote de diarrea aguda con sangre; el brote determinó que se debía a hamburguesas contaminadas. Desde entonces, la mayoría de las infecciones han provenido de comer carne de vacuno molida insuficientemente cocinada. Robin Cook escribió una novela sobre el tema titulado Toxina.
En 1996, cerca de Seattle se produjo un brote a causa de esta bacteria, que se encontró en botellas de zumo de manzana de la marca Odwalla. Muchas personas, entre ellas bebés y niños, murieron después de tomar este zumo. La bacteria entró en las botellas porque las manzanas que se exprimieron contenían excrementos de venados de la zona y no hubo ningún tipo de pasteurización.
Se diferencia de las otras E. coli en que no fermenta el sorbitol, no crece a 44 °C y no produce β-glucoronidasa. La combinación de letras y números en el nombre de la bacteria se refiere a los marcadores antigénicos específicos que se encuentran en su superficie y la distingue de otros tipos de E. coli:
El antígeno somático O, proveniente del lipopolisacárido de la pared celular;
El antígeno flagelar H, compuesto por 75 polisacáridos.
El grupo de riesgo comprende prácticamente a todas las personas inmunocompetentes o no. Los niños menores de 5 años de edad con problemas de alimentación, así como los ancianos son los más susceptibles de contraer complicaciones graves.

Patogenia
E. coli puede causar infecciones intestinales y extra-intestinales generalmente severas, tales como infecciones del aparato excretor, meningitis, peritonitis, mastitis, septicemia y neumonía Gram-negativa.

Virulencia
La E. coli entérica está dividida por sus propiedades virulentas, pudiendo causar diarrea en humanos y otros animales, como cerdos, cabras, ganado, perros y caballos. Otras cepas causan diarreas hemorrágicas por virtud de su agresividad, patogenicidad y toxicidad.En muchos países ya hubo casos de muerte con esta bacteria. Generalmente le pasa a niños entre 1 año y 8 años. Causado generalmente por la contaminación de alimentos, y posterior mala cocción de los mismos, es decir, a temperaturas internas y externas menores de 70ºC.

Infecciones urinarias
Artículo principal: Infección urinaria
Son más comunes en mujeres por lo corto de la uretra (25–50 mm / 1-2 pulgadas) en comparación con los hombres (unos 20 cm / 8 pulgadas). Entre los ancianos, las infecciones urinarias tienden a ser de la misma proporción entre hombres y mujeres. Debido a que la bacteria invariablemente entra al tracto urinario por la uretra (una infección ascendente), los malos hábitos sanitarios pueden predisponer a una infección, sin embargo, otros factores cobran importancia, como el embarazo, hipertrofia benigna o maligno de próstata, y en muchos casos el evento iniciante de la infección es desconocida. Aunque las infecciones ascendentes son las causantes de infecciones del tracto urinario bajo y cistitis, no es necesariamente ésta la causa de infecciones superiores como la pielonefritis, que puede tener origen hematógena.

Patogenicidad
La capacidad de establecer una infección está determinada por componentes de patogenicidad, entre ellas:
Adhesinas, en especial en los pilis que aglutinan glóbulos rojos y el tipo P involucrado en pielonefritis humana.
Hemolisinas, frecuente en pielonefritis, por una endotoxina ligada al lípido A, de naturaleza pirógena, y también por citotoxinas que actúan sobre la adenil ciclasa, similar al Vibrio cholerae. Son proteínas de membrana termo-resistentes y no son antigénicas, que le confiere al organismo la capacidad de invadir células epiteliales.

Tratamiento
El uso de antibióticos es poco eficaz y casi no se prescribe. Para la diarrea se sugiere el consumo de abundante líquido y evitar la deshidratación. Cuando una persona presenta diarrea no debe ir a trabajar o asistir a lugares públicos para evitar el contagio masivo. Sin embargo en algunas patologías como la pielonefritis hay que considerar el uso de alguna cefalosporina endovenosa.

Clasificación

Este artículo o sección necesita fuentes o referencias que aparezcan en una publicación acreditada, como libros de texto u otras publicaciones especializadas en el tema.Puedes dar aviso al autor principal del artículo pegando el siguiente código en su página de discusión: {{subst:Aviso referenciasEscherichia coli}} ~~~~
Se distinguen seis cepas según su poder patógeno, -también se les puede llamar virotipos:

E. coli enteropatogénica (ECEP)
Escherichia coli enteropatógena (ECEP) es el agente causal predominante de diarrea en niños que viven en países en vía de desarrollo (Nataro y Kaper, 1998). EPEC interacciona con las células epiteliales produciendo una lesión histopatológica característica conocida como “adherencia / destrucción” o lesión A/E (attaching and effacing) (Kaper, 1998). En la producción de la lesión A/E por EPEC, se observan cambios importantes en el citoesqueleto de la célula hospedera, los cuales incluyen a la acumulación de actina polimerizada formando una estructura parecida a una copa o pedestal (Knutton y cols., 1989; Donnenberg y cols., 1997). La adherencia inicial está relacionada a la producción de la fimbria BFP (Bundle Forming Pilus), el cual se requiere para la producción de diarrea por EPEC. La expresión de la fimbria BFP de Escherichia coli Enteropatógena (EPEC), codificada en el operón bfp, responde positiva o negativamente a señales ambientales que pudieran encontrarse en el hospedero y determinar la adherencia bacteriana a la superficie de las células del epitelio intestinal.
La regulación coordinada de estos genes involucrados en la patogénesis es una necesidad importante para la adaptación de las bacterias patógenas a los diferentes ambientes encontrados dentro del hospedero durante la infección. La expresión de los factores de virulencia de EPEC, en respuesta a señales ambientales, podría involucrar una red compleja de interacciones entre reguladores transcripcionales específicos y globales a través de un circuito regulador iniciado con la activación del operones bfp y perABC (bfpTVW) por PerA (BfpT), el cual podría estar detectando las señales del medio, actuando como regulador maestro y PerC (bfpW) como segundo regulador al activar la expresión del operón LEE1. Debido a la potencial importancia de PerA como factor regulador para los determinantes de virulencia de EPEC, estamos interesados en el estudio de los mecanismos moleculares de la función de PerA (BfpT) como activador de su propia expresión y la del operón bfp. Este regulador podría poseer dominios estructurales que estén involucrados en la unión a DNA, interacción con la RNA polimerasa, interacción con otras proteínas reguladoras que actúen como correguladores para inducir la expresión de los operones bfp y perABC (bfpTVW). Mientras que la unión a DNA ha sido bien caracterizada en varios miembros de la familia AraC/XylS, la activación transcripcional por proteínas de esta familia es menos comprendida. Varios de los miembros de esta familia activan factores de virulencia en patógenos bacterianos y por ende son interés como posibles blancos de agentes antibacterianos CHPG.

E. coli enterotoxigénica (ECET)
Se parece mucho a V. cholerae, se adhiere a la mucosa del intestino delgado, no la invade, y elabora toxinas que producen diarrea. No hay cambios histológicos en las células de la mucosa y muy poca inflamación. Produce diarrea no sanguinolenta en niños y adultos, sobre todo en países en vías de desarrollo, aunque los desarrollados también se ven afectados.

E. coli enteroinvasiva (ECEI)
Es inmóvil, no fermenta la lactosa. Invade el epitelio intestinal causando diarrea sanguinolenta en niños y adultos. Libera el calcio en grandes cantidades impidiendo la solidificación ósea, produciendo artritis y en algunos casos arterioesclerosis.

E. coli enterohemorrágica o verotoxigénica (ECEH)
Produce verotoxinas que actúan en el colon. Sus síntomas son: primero colitis hemorrágica, luego síndrome hemolítico ureico (lo anterior más infección del riñón, posible entrada en coma y muerte), y por último, púrpura trombocitopénica trombótica (lo de antes más infección del sistema nervioso central). Esta cepa no fermenta sorbitol y posee un fago, donde se encuentran codificadas las verotoxinas, también llamadas "Toxinas Shiga", no posee fimbria formadora de mechones, en vez de esto posee una fimbria polar larga que usa para adherencia.
E. coli enteroagregativa (ECEA)
Los estudios realizados sobre la capacidad adherente de la E. coli a células heterohaploides (HEp-2) muestran que, además de la adherencia localizada, existen otros 2 mecanismos: uno llamado difuso, que se produce cuando las bacterias se unen al citoplasma celular, y otro agregativo, que se forma cuando las bacterias se acumulan en forma de empalizada tanto en la superficie celular como en el vidrio de la preparación.130-132
Estudios recientes han definido algunas características de estas cepas, como es el fenómeno de la autoagregación, que está determinado por un plásmido de 55 a 65 mdaltons, que codifica para una fimbria de adherencia, un lipopolisacárido uniforme y una nueva enterotoxina termoestable (TE) denominada toxina enteroagregativa estable (TEAE).133 Se han detectado algunas cepas que elaboran una segunda toxina termolábil antigénicamente relacionada con la hemolisina de E. coli, la cual puede causar necrosis de las microvellosidades, acortamiento de las vellosidades intestinales e infiltración mononuclear de la submucosa. 134
La capacidad de las cepas de E. coli enteroagregativa (ECEAgg) para sobrevivir largo tiempo en el intestino humano y la producción de una o más de las toxinas descritas, pudiera explicar la persistencia de las diarreas por ellas producidas. Se han aislado cepas de ECEAgg en niños con diarrea con sangre,135,136 aunque en la actualidad se desconoce si existen diferentes cepas agregativas relacionadas con diarreas persistentes u otras en relación con diarrea con sangre.
Estudios recientes muestran la existencia de una toxina que es capaz de producir lesiones hemorrágicas severas cuando se inoculan ratas con la toxina purificada. Esto pudiera apoyar la capacidad de cepas de ECEAgg para causar diarrea con sangre en humanos. Estudios realizados en México identifican el 51 % de pacientes con diarrea persistente como portadores de ECEAgg y sólo el 5 % en niños asintomáticos CHPG.

E. coli Adherencia difusa (ECAD)
Se adhiere a la totalidad de la superficie de las células epiteliales y habitualmente causa enfermedad en niños inmunológicamente no desarrrollados o malnutridos. No se ha demostrado que pueda causar diarrea en niños mayores de un año de edad ni en adultos.

Referencias

Enlaces externos
CDC.gov/ncidod/dbmd/DiseaseInfo/EscherichiaColi_g_sp.htm Centros para el Control y la Prevención de Enfermedades: material publicado bajo dominio público .
Escherichia colimente en experimentos de genética y biotecnología molecular.

tarea no.2

salmonella tiphi
Salmonella es un género de bacteria que pertenece a la familia Enterobacteriaceae, formado por bacilos gramnegativos, anaerobios facultativos, con flagelos perítricos y que no desarrollan cápsula ni esporas. Son bacterias móviles que producen sulfuro de hidrógeno (H2S). Fermentan glucosa por poseer una enzima especializada, pero no lactosa, y no producen ureasa.
Es un agente zoonótico de distribución universal. Se transmite por contacto directo o contaminación cruzada durante la manipulación, en el procesado de alimentos o en el hogar, también por vía sexual.
Algunas salmonellas son comunes en la piel de tortugas y de muchos reptiles, lo cual puede ser importante cuando se manipulan a la vez este tipo de mascotas y alimentos.
Contenido
1 Taxonomía
2 Epidemiología
3 Microbiología
4 Patogenia
4.1 Virulencia
5 Tratamiento
6 Profilaxis
7 Referencias
8 Véase también
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[editar] Taxonomía
El género Salmonella es de taxonomía difícil, modificada en estos últimos años por el aporte de estudios moleculares de homología de ADN que han clarificado el panorama taxonómico de las enterobacterias.
Para la bacteriología clínica, Salmonella es un bacilo patógeno primario (como Shigella, Yersinia y ciertas cepas de E. coli), anaerobio facultativo, algunos móviles y no fermentan la lactosa. S. typhi es la única serovariedad que no produce gas en la fermentación de los azúcares.
Clásicamente se distinguían tres únicas especies patógenas primarias: S. typhy, S. cholerae-suis y S. enteritidis. A su vez, según la serotipificación de Kauffman y White, eran clasificadas en más de 2000 serotipos en base a los antígenos flagelares H (proteicos) y antígenos somáticos O (fracción polisacárida del lipopolisacárido bacilar). S. typhi posee además un antígeno de virulencia (Vi).
El tratamiento taxonómico actual de Salmonella ha simplificado el espectro, reagrupando todas las cepas (patógenas o no) en dos únicas especies: S. enterica y S. bongori. Ésta última (previamente subespecie V) no es patógena para el ser humano.
La especie S. enterica tiene seis subespecies (a veces presentadas como subgrupos bajo numeración romana):
I enterica
II salamae
IIIa arizonae
IIIb diarizonae
IV houtenae
V S. bongori, ya incluida en una especie distinta
VI indica
Cada subespecie a su vez, está conformada por diversos serotipos, habiéndose identificado hasta la fecha más de 2500. Una de ellas es S. enterica subsp. enterica (o subgrupo I), se divide en cinco serogrupos: A, B, C, D y E. Cada serogrupo comprende múltiples componentes, son las serovariedades (serotipos).
Esta clasificación implica una terminología de uso poco práctico en la clínica bacteriológica, por lo tanto, en términos médicos, la nomenclatura es diferente y simplificada, pues se consideran los nombres de los serotipos (serovaridades) de Salmonella como si fuesen nombres de especies. Por ejemplo, "Salmonella enterica subgrupo entérica serotipo Typhimurium", se refiere como "Salmonella typhimurium". Estas denominaciones, aunque menos correctas desde el punto de vista taxonómico estricto, son de aceptación mundial.
Con importancia clínico epidemiológica, las más de 2000 serovariedades de Salmonella pueden agruparse en tres divisiones ecológicas (spp. son subespecies):
Salmonella spp. adaptadas a vivir en el ser humano, entre ellas, S. typhi, S. paratyphi A, B y C;
Salmonella spp. adaptadas a hospederos no humanos, que circunstancialmente pueden producir infección en el hombre, entre ellas, S. dublin y S. cholerae-suis;
Salmonella spp. sin adaptación específica de hospedero, que incluye a unas 1800 serovariedades de amplia distribución en la naturaleza, las cuales causan la mayoría de las salmonelosis en el mundo.

[editar] Epidemiología
Véase también: María la Tifosa
La Salmonella recibe su nombre por Daniel Elmer Salmon, un patólogo veterinario norteamericano, aunque fue su colega y contemporario Theobald Smith (conocido por su trabajo con anafiláxis) quien descubrió la bacteria por primera vez en 1885, aislándola de cerdos con cólera.[1] [2] La salmonela entérica causada por Salmonella typhimurium, con más de 2.000 cepas descritas,[3] es de importancia en países en desarrollo, donde su incidencia está en aumento, y en algunos países, la enfermedad es endémica.[4]
La salmonelosis es una enfermedad de transmisión alimentaria, en especial por alimentos de origen animal y pueden aparecer en brotes en escuelas, guarderías, restaurantes y residencias de ancianos. El período de incubación es por lo general entre 12 a 36 horas, a veces hasta 6 y 48 horas. El único reservorio de la Salmonella typhi es el hombre, de modo que se transmite de una persona a otra.[5]
En el caso de la Salmonella, es necesaria una inoculación relativamente grande, entre 10 a 100 millones de organismos, para provocar los síntomas en humanos saludables, según estudios hechos con voluntarios,[6] al ser estas bacterias muy poco resistentes a los medios ácidos. Sin embargo, un pH estomacal artificialmente elevado, poco ácido, reduce enormemente el número de organismos necesario para provocar síntomas (de 10 a 100 órdenes de magnitud).
La fiebre paratifoidea tiene ciertas similaridades con la fiebre tifoidea, pero tiene un curso más benigno. Las infecciones por S. Paratyphi A son comunes en África, la paratifoidea B es más frecuente en Europa que se presenta como una gastroenteritis severa y la paratifoidea C es una infección rara, generalmente vista en el Extremo Oriente que se presenta como una septicemia. La salmonella habita normalmente en la superficie de los huevos, la piel de tomates y de aquellos frutos y verduras que tienen contacto con la tierra.

[editar] Microbiología
Salmonella crece con facilidad en agar sangre formando colonias de 2 a 3 milímetros. En laboratorios de microbiología clínica se aísla con medios selectivos, Selenito, Hektoen, SS o XLD para inhibir el crecimiento de otras bacterias patógenas y de la flora intestinal saprófita. Tienen los siguientes antígenos:
Somático O, del lipopolisacárido en la pared celular, termoestable y es la base de la clasificación en subgrupos.
Flagelar H, de la proteína flagelina, termolábil, es la base de la clasificación de especies.
Envoltura Vi, termolábil, responsable de la virulencia de varias especies patogénicas.

[editar] Patogenia
Artículo principal: Salmonelosis
Produce salmonelosis con un período de incubación de entre 5 horas y 5 días, diarrea y dolor abdominal, a través de las heces del enfermo se elimina un gran número de esta bacteria y fiebre entérica con un periodo de incubación de 7 a 28 días, causante de dolor de cabeza, fiebre, dolor abdominal y diarrea, erupción máculo-papulosa en pecho y espalda, los enfermos presentan un período de convalecencia entre 1 y 8 semanas, las personas curadas eliminan Salmonella. También puede ocasionar fiebres entéricas o infección intestinal por intoxicación con algunos alimentos.

[editar] Virulencia
Salmonella al igual que otras bacteria Gram negativas usan un sistema secretor especializado (denominado tipo III) para inyectar dentro de células eucariotas ciertas proteínas efectoras que manipulan las vías de señalización celular y de la bacteria. Se ha observado la entrega de la proteína SipA a células que debilitan la maquinaria intracelular del huésped y promueven la virulencia en mamíferos en aproximadamente 10 minutos, dejando la bacteria virtualmente deprovista de SipA, efectivamente estableciendo un nicho para la multiplicación intracelular de la bacteria.[7] [8]

[editar] Tratamiento
Puede manifestarse por fiebre prolongada o recurrente y asociarse a lesiones locales óseas, articulares, pleurales, pulmonares; y con aneurismas micóticos de la aorta abdominal, que es la manifestación observada en pacientes con infección VIH. Se recomienda la ciprofloxacino en dosis de 750 mg dos veces al día. aparte de estos tratamientos , el de soporte es uno de los más recomendables, es decir, hidratarlo constantemente.

[editar] Profilaxis
La prevención de Salmonella como contaminante de alimentos involucra el sanitar eficazmente las superficies de contacto con los alimentos. El alcohol ha sido efectivo como agente desinfectante tópico en contra de la Salmonella, así como el cloro. La comida que contenga huevos crudos debe ser cocinada adecuadamente o congelada antes de consumirla.
Cualquier alimento cocinado de manera imperfecta o no cocinado, especialmente en carne, aves, huevos (porque este sale por el mismo conducto de las heces y como la salmonella es una enobacteria se contamina el huevo, por eso es importante tener practicas de higiene en la manipulación de estos) y leche, es un buen vehículo de transmisión de Salmonella.
Su tiempo de supervivencia en alimentos a temperatura ambiente es de varios días llegando incluso a los límites siguientes:[cita requerida]
mantequilla: hasta 10 semanas
leche: hasta 6 meses
chocolate: varios meses
Existen unos métodos destinados a evitar la proliferación de este género en los alimentos, por ejemplo, destruir la bacteria en los alimentos mediante la cocción, evitar la contaminación cruzada durante la manipulación de los mismos y almacenar los alimentos a bajas o altas temperaturas para evitar su crecimiento.

[editar] Referencias
↑ WhoNamedIt.com - Salmonella. [1]
↑ WhoNamedIt.com - Daniel Elmer Salmon. [2]
↑ Ryan KJ; Ray CG (editors) (2004). Sherris Medical Microbiology, 4th ed. edición, McGraw Hill. ISBN 0-8385-8529-9.
↑ I. Méndez, N. Mossos, D. Mogollón, R. Poutou, S. Máttar. Epidemiological relationships among strains of Salmonella entérica subsp. entérica isolated from humans, poultry and food. Universitas Scientiarium - Revista de la Facultad de Ciencias. Vol. 11, No. 1, 5-13. enero-junio de 2006. [3]
↑ BRAVO PEREZ, Rigoberto, PUGA TORRES, Mario Santiago, BARREIRO VIERA, Dionys et al. Presentación de un caso atípico de fiebre tifoidea. Rev Cub Med Mil. [online]. ene.-mar. 2002, vol.31, no.1 [citado 31 Octubre 2007], p.54-57. Disponible en la World Wide Web: [http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0138-65572002000100009&lng=es&nrm=iso[. ISSN 0138-6557.
↑ Salmonella Infection en eMedicine (inglés)
↑ Markus C. Schlumberger, Andreas J. Müller, Kristin Ehrbar, Brit Winnen, Iwan Duss, Bärbel Stecher, and Wolf-Dietrich Hardt. (August 30, 2005). «Real-time imaging of type III secretion: Salmonella SipA injection into host cells.». Proceedings of the National Academy of Sciences. PNAS 102 (35): 12548-12553. [4]
↑ Citado en: Editors' Choice: Highlights of the recent literature. Science 2 September 2005:Vol. 309. no. 5740, p. 1459. DOI: 10.1126/science.309.5740.1459a. [5]
Farreras Valentí P & Rozman C (et al.): Medicina Interna, Harcourt, 2000.

[editar] Véase también
Shigella
Yersinia
Escherichia
Fiebre tifoidea
Obtenido de "http://es.wikipedia.org/wiki/Salmonella"
Categorías: Agentes biológicos patógenos Enfermedades de transmisión sexual Enterobacteriales

tarea no. 2

brucella
GENETICA DE BRUCELLA.
El ADN de Brucella contiene un 58-59% de G + C (guanina y citosina) y el tamaño total del genoma se ha estimado en aproximadamente 2,5 x 106 pares de bases (Allardent-Servent y col 1988); este tamaño es menor al de Escherichia coli (4,7 x 106 pares de bases). Dos características genéticas de Brucella llaman especialmente la atención, en primer lugar, la existencia de dos cromosomas circulares en la mayoría de las especies y biotipos, y en segundo lugar, la ausencia de plásmidos. Esta última característica refleja probablemente la adaptación a un nicho ecológico (el ambiente intracelular) estable y sin competencia microbiana, en el que no es necesaria la plasticidad genética que se deriva de los plásmidos y que es propia de ambientes con gran cantidad de microbios (intestino, tierra, etc.). El género Brucella tiene seis especies reconocidas, las que exhiben distintas preferencias por su huésped (Mayer 1964) y muestran más de 94% de homología en su genoma (Halling y col 2005), lo que apoya la proposición de que las especies clásicas de Brucella son cepas de Brucella melitensis (Verger y col 1995). Sin embargo, se ha encontrado polimorfismo en determinadas secuencias genómicas que coinciden con las especies clásicas e incluso con las biovariedades. Se estima, además, que el 8% del genoma de Brucella se destina a funciones necesarias para la sobrevivencia y la virulencia, en comparación al estimado para Salmonella que es sólo el 3-4% (Hong y col 2000).

investigacion tarea no. 2

proteus abortus

El Síndrome de Proteus es una enfermedad congénita que causa un crecimiento excesivo de la piel y un desarrollo anormal de los huesos, normalmente acompañados de tumores en más de la mitad del cuerpo.

Descripción

El Síndrome de Proteus es extremadamente raro. Desde que el Dr. Michael Cohen lo identificó en 1979,[1] sólo se han confirmado poco más de 200 casos en todo el mundo. Puede que se hayan dado más, pero los que son correctamente diagnosticados suelen tener manifestaciones evidentes del síndrome, estando considerablemente desfigurados.
Esta extraña enfermedad habría permanecido oculta de no ser por que Joseph Merrick – inmortalizado como el "Hombre Elefante" debido al aspecto que le daban los tumores de su cabeza y el color grisaceo de su piel – fue diagnosticado más tarde de un severo caso de Síndrome de Proteus además de, neurofibromatosis, cosa que los médicos pensaban anteriormente que tenía.[2] Extrañamente, el brazo izquierdo y los genitales de Merrick no estaban afectados por la enfermedad que había deformado el resto de su cuerpo.
El Síndrome de Proteus causa un crecimiento anormal de la piel, huesos, músculos, tejido adiposo, y vasos sanguíneos y linfáticos.
Es una enfermedad progresiva, los niños suelen nacer sin ninguna deformidad evidente. Conforme crecen aparecen los tumores y el crecimiento de la piel y de los huesos. La gravedad y la localización de estos crecimientos asimétricos varían ampliamente, aunque suelen darse en el craneo, uno o más miembros y en la plantas de los pies. Hay un riesgo de muerte prematura en los individuos afectados debido a trombosis y tromboembolismo pulmonar, causadas por malformaciones asociadas a este desorden en los vasos. Otros riesgos pueden venir provocados por el peso del tejido extra- Se cree que Joseph Merrick murió por el peso de su enorme y pesada cabeza que venció la resistencia de su cuello y cayó hacia atrás, fracturándoselo.
El desorden afecta a los dos sexos por igual, y puede darse en todas las etnias.

Referencias
↑ Cohen MM, Hayden PW (1979). «A newly recognized hamartomatous syndrome». Birth Defects Orig. Artic. Ser. 15 (5B): 291-6. PMID 118782.
↑ Tibbles J, Cohen M (1986). «The Proteus syndrome: the Elephant Man diagnosed.». Br Med J (Clin Res Ed) 293 (6548): 683-5. PMID 3092979.

Enlaces externos
"El hombre elefante", extenso trabajo sobre Joseph Merrick y su enfermedad.
Mandy Sellars., La mujer con piernas de 180 cm
Obtenido de "http://es.wikipedia.org/wiki/S%C3%ADndrome_de_Proteus"

INVESTIGACION DEL 3 PARCIAL TAREA 1

INVESTIGACION DE LOS MICROORGANISMOS TAREA 1


Los paramecios (género Paramecium) son protozoos ciliados con forma de suela de zapato o elipsoide, habituales en aguas dulces estancadas con abundante materia orgánica, como charcos y estanques. Son probablemente los seres unicelulares mejor conocidos y los protozoos ciliados más estudiados por la Ciencia. El tamaño ordinario de todas las especies de paramecios es de apenas 0'05 milímetros.
Carecen de flagelos, pero los cilios son muy abundantes y recubren toda su superficie. A ellos les corresponde proporcionar movimiento al organismo. La membrana externa absorbe y expulsa regularmente el agua del exterior con el fin de controlar la osmorregulación, proceso dirigido por dos vacuolas contráctiles.
En su anatomía destaca el citostoma, una especie de invaginación situada a todo lo largo del paramecio de la que éste se sirve para capturar el alimento, conformado por partículas orgánicas flotantes y microorganismos menores. El citostoma conduce a una citofaringe antes de que el alimento pase al interior de este protozoo. Otros orgánulos de fácil observación son el núcleo eucariota, situado junto a un "micronúcleo" en el centro del paramecio, y las vacuolas digestivas, que digieren constantemente el alimento capturado. Los desechos se expulsan por exocitosis, mediante vacuolas de secreción que se originan a partir de las digestivas.
Como muchos otros microorganismos, los paramecios se reproducen asexualmente por fisión binaria.

Se trata de un protozoo minúsculo con forma de zapatilla que abunda en lagos, estanques y charcos. Se mueve constantemente, para lo cual se sirve de innumerables hebras microscópicos llamados cilios, con los que golpea el agua a modo de remos. Los paramecios se alimentan de bacterias y otros organismos microscópicos. Para atrapar su alimento, utilizan una boca en forma de ranura.

Especies
En la actualidad se reconocen 14 especies dentro del género Paramecium, aunque existen varias nombradas pero que se consideran dudosas. Las seguras son las siguientes:
P. aurelia Ehrenberg, 1838
P. bursaria Ehrenberg & Focker, 1836
P. calkinsi Woodruff, 1921
P. caudatum Ehrenberg, 1838
P. duboscqui Chatton & Brachon, 1933
P. jenningsi Diller & Earl, 1958
P. multimicronucleatum Powers & Mitchell, 1910
P. nephridiatum von Gelei, 1925
P. polycaryum Woodruff, 1923
P. putrinum Claparede & Lachmann, 1858
P. trichium Stokes, 1885
P. woodruffi Wenrich, 1928
Obtenido de "http://es.wikipedia.org/wiki/Paramecium"
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jueves, 7 de mayo de 2009

Cuestionario: 2 Segunda Unidad.

Cuestionario: 2 Segunda unidad.
1.- Es un instrumento para medir dimensiones de objetos relativamente pequeños, Se atribuye al cosmógrafo y matemático portugués que se llama:
Pie de rey
2.- En qué año se le atribuye el pie de rey al cosmógrafo y matemático portugués.
1492-1577
3.- También se ha llamado pie de rey al:
Calibre
4.- En qué año se le atribuye el pie de rey al geómetra Pierre Vernier.
1580-1637
5.- ¿Qué otro nombre recibe el origen del pie de rey?
Pie de rey al vernier
:::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::
R: Nombre: PIE DE REY



En los recuadros siguientes ponga el número y nombre correspondiente de la figura de medición

1. Mordazas para medidas externas.
2. Mordazas para medidas internas.
3. Coliza para medida de profundidades.
4. Escala con divisiones en centímetros y milímetros.
5. Escala con divisiones en pulgadas y fracciones de pulgada.
6. Nonio para la lectura de las fracciones de milímetros en que esté dividido.
7. Nonio para la lectura de las fracciones de pulgada en que esté dividido.
8. Botón de deslizamiento y freno .